小鼠组织基因组DNA提取

TE缓冲液：PH8.0，由10 mM Tris HCl和1 mM EDTA配成。

RNase A（3 mg）：使用前加入300 ul无菌双蒸水，煮沸10 min后使其自然冷却后使用，-20 ℃冻存。

Proteinase K（12 mg）：使用前加入600 ul无菌水，分装成小份，-20 ℃冻存。

Cell Lysis Solution 与 Precipitation Solution：溶液出现絮状沉淀50 ℃加热溶解后使用。

1.2 mol/L NaCl。冰冷乙醇和氯仿自备。

取30 mg左右新鲜组织，加600 ul TE缓冲液，手工匀浆数次。

吸取300 ul匀浆加600 ul Cell Lysis Solution，混匀。

再加入9 ul Proteinase K（可适当增加）混匀，置于55 ℃水浴30 min以上（可达2.5 h），其间上下混匀几次。

加入600 ul氯仿（用户自备），轻柔上下混匀，不能太剧烈，以保证DNA的完整性。

在台式离心机上，10000转/分，室温离心2 min。此时应分成三层，基因组DNA在上层中，如未能分层，表明样品与氯仿未混匀（可通过延长离心时间或增加离心速度获得上清）。

取500 ul上清液，置于无菌1.5 ml离心管中，加入500 ul Precipitation Solution，混匀多次至出现絮状物，室温静置2 min。

10000转/分，离心2 min。

弃除上清，注意不要倒掉沉淀，立即加入100 ul 1.2 mol/L NaCl，轻轻振荡直至DNA样品完全溶解，加入3 ul RNase A，置于37 ℃ 10 min，以去除RNA。

加入300 ul冰冷乙醇（终浓度为75%，沉淀效果最佳），-20 ℃放置10 min。10，000转/分，离心2 min。倒掉乙醇，倒置室温干燥10~15 min。若DNA量多，可再重复沉淀一次。DNA用TE缓冲液或100 ul三蒸水溶解。

应避免多次冻融样品，因为每次冻融都大大降低完整DNA的产率。

加氯仿充分混匀，若离心后上清不到500 ul，可适当延长离心时间或增加离心速度。

吸取DNA上清时，可用剪刀稍剪枪头尖部，以防止虹吸现象。

操作步骤中许多数值可进行成比例改变，如上清与预备液按1：1，氯化钠与无水乙醇按1：3等。

转录活性很高的组织或细菌中通常含有大量的RNA，他们可能与DNA一起被分离出来。RNA的存在并不影响PCR反应。如果需要制备RNA- free的基因组DNA。可在第6步加入200 ul的RNase A，37 ℃保温10 min即可。

用分光光度计测量DNA含量按1 OD260=50 mg 基因组DNA；进行0.7%琼脂糖凝胶电泳判定DNA的完整性，也可以判定样品中是否有RNA。本试剂盒可抽提长抵达50kb以上的DNA。一般在DNA样品，OD260/OD280比值大于1.8，可能存在RNA；OD260/OD280比值小于1.6，可能存在蛋白质或酚。但RNA样品中OD260/OD280比值小于2可能存在蛋白质或酚，均需要进一步纯化。

通常50ul体系PCR反应中用1~5 ul DNA。